临床研究
HA117调节DPF3表达对神经母细胞瘤分化的影响
中华小儿外科杂志, 2017,38(06) : 441-445. DOI: 10.3760/cma.j.issn.0253-3006.2017.06.010
摘要
目的

探讨HA117及DPF3在儿童神经母细胞瘤(NB)中的表达及意义,及其对NB分化的影响和可能机制。

方法

运用实时荧光定量PCR(qRT-PCR)、免疫组化法检测HA117、DPF3在35例NB、8例节细胞神经母细胞瘤(GNB)和10例神经节细胞瘤(GN)中的表达水平。构建HA117过表达和空载慢病毒,分别转染SH-SY5Y细胞株,构建HA117过表达组和对照组。采用qRT-PCR和Western Blot检测HA117和DPF3的RNA和蛋白质表达水平。采用10 μmol/L维甲酸诱导HA117过表达组和对照组细胞,普通光学显微镜观察细胞形态,免疫荧光法检测神经特异性标志物MAP2蛋白质表达,Western Blot检测HA117过表达组和对照组细胞MAP2、NSE蛋白质的表达情况。

结果

HA117的RNA在NB中的相对表达量为30.14±15.96,明显高于GNB/GN的1.03±0.37(P<0.05),DPF3的mRNA在NB中的表达量为0.81±0.17,明显低于GNB/GN的3.14±1.09(P<0.05),与HA117的表达趋势相反。免疫组化检测发现DPF3在GNB/GN中呈强阳性表达,在分化中的NB中呈弱阳性表达,在未分化/分化差的NB中呈阴性表达。过表达HA117可在mRNA和蛋白水平明显下调SH-SY5Y中DPF3的表达。经10 μmol/L维甲酸诱导7 d后,对照组细胞生长明显减慢,细胞长出突起,发生神经元样分化;HA117过表达组SH-SY5Y的MAP2、NSE的表达水平明显低于对照组(P<0.05)。

结论

HA117和DPF3的表达可能与NB的分化相关,HA117可能通过下调DPF3的表达抑制NB的分化。

引用本文: 吴欢, 金先庆, 李爽爽, 等.  HA117调节DPF3表达对神经母细胞瘤分化的影响 [J] . 中华小儿外科杂志,2017,38 (06): 441-445. DOI: 10.3760/cma.j.issn.0253-3006.2017.06.010
参考文献导出:   Endnote    NoteExpress    RefWorks    NoteFirst    医学文献王
扫  描  看  全  文

正文
作者信息
基金 0  关键词  0
English Abstract
评论
阅读 0  评论  0
相关资源
引用 | 论文 | 视频

版权归中华医学会所有。

未经授权,不得转载、摘编本刊文章,不得使用本刊的版式设计。

除非特别声明,本刊刊出的所有文章不代表中华医学会和本刊编委会的观点。

神经母细胞瘤(neuroblastoma,NB)是儿童时期最常见的颅外实体瘤之一,占儿童期肿瘤相关死亡率的15%,起源于分化异常或分化阻滞的交感神经系统神经嵴干细胞[1,2]。NB的生物学特性及临床表现异质性大,既可早期发生转移致死,也可在部分病人表现为自然消退或转化成良性肿瘤,分化程度越高预后越好[3]。目前已有研究报道TrkA、TrkB、TrkC、p75、GDNF、Ret及CD133等多种分子参与NB的分化过程,然而NB分化的具体分子机制尚不完全清楚[4]。HA117是本课题组前期研究白血病耐药发现的一个耐药相关序列,在多种恶性肿瘤中高表达,且与先天性肠无神经节细胞症(Hirschspung’s Disease,HD)的发生相关,HA117可能具有抑制胚胎器官正常分化的作用[5,6]。以往的研究显示,HA117的毗邻基因DPF3,与神经分化相关[7]。但HA117是否通过抑制DPF3而参与NB分化,尚无相关报道。本研究通过检测HA117及DPF3在NB中的表达,分析其临床意义;采用慢病毒过表达技术分析HA117对SH-SY5Y分化的影响,初探HA117在NB发生中的作用机制。

资料与方法
一、实验材料

收集2009年1月至2016年6月在重庆医科大学附属儿童医院确诊的35例NB,8例节细胞神经母细胞瘤(ganglioneuroblastoma,GNB)和10例神经节细胞瘤(ganglioneuroma,GN)的新鲜切除的手术标本。35例NB中,男19例,女16例;年龄4个月~7岁,平均(91±42)个月。8例GNB中,男5例,女3例;年龄5个月~6岁,平均(82±36)个月。10例GN中,男6例,女4例;年龄6个月~7岁,平均(87±38)个月。所有患儿术前均未进行放化疗。组织收集后分成两部分,一部分用于石蜡包埋,石蜡切片机切成4 μm厚组织切片备用,一部分立即置于-80 ℃冰箱保存。本研究通过了重庆医科大学附属儿童医院伦理委员会审查[2016年伦审(研)第(133)号]。

二、主要试剂与仪器

神经母细胞瘤细胞SH-SY5Y。DMEM培养基购自(Gibco)公司、胎牛血清购自(ExCell)公司。TRIzol试剂(Life Technologies)、逆转录试剂盒(TaKaRa)、SYBR Green Ⅱ荧光染料(TaKaRa)、全蛋白提取试剂盒(南京凯基公司)、DPF3兔多克隆抗体(Abcam)、NSE小鼠单克隆抗体(Abcam)、MAP2兔多克隆抗体(Abcam)、β-actin小鼠单克隆抗体(Abcam)、通用型两步法免疫组化检测系统(中彬金桥)、Cy3荧光二抗(联科生物)、HA117慢病毒购自上海吉玛公司、CFX96 Cycler荧光定量PCR仪、凝胶电泳仪(美国BIO-RAD)、转印电泳槽(BID-RAD)、显微镜(Nikon E800,分析软件NIS-ELEMENtS br.3.0)。

三、方法
1.qRT-PCR检测神经母细胞瘤组织和细胞中HA117和DPF3的RNA表达

采用TRIzol法提取组织和细胞总RNA,紫外分光光度法检测RNA浓度和纯度,参照Takara逆转录试剂盒将RNA逆转录为cDNA,逆转录体系为20 μl,采用SYBR GREEN荧光染料qRT-PCR法对cDNA进行扩增,以β-Actin为内参照。引物在上海生工生物工程股份有限公司合成,HA117上游引物:5’-CAGAGTCAGGGACTTCAGCCTTAT-3’,下游引物:5’-CTGTTTCCTTCTCACTCCCAACCA-3’;DPF3上游引物:5’-GACCGAGGCTGTCAAGACCTAC-3’,下游引物:5’-CATGTGATAGCCTCGGTCACAG-3’;β-Actin上游引物:5’-AGACCTGTACGCCAACACAG-3’,下游引物:5’-GTACTTGCGCTCAGGAGGAG-3’。每份标本设3个复孔,实验重复3次,利用RealTime-PCR detection System软件(BIO-RAD)行半定量分析,比较基因的相对表达量。

2.免疫组化法检测神经母细胞瘤组织中的DPF3蛋白表达

石蜡包埋块切片备用,切片厚度为5 μm,经脱蜡、枸橼酸钠抗原修复,3% H2O2室温孵育阻酶,小牛血清封闭,滴加DPF3兔多克隆抗体(1∶200稀释),4 ℃过夜,经免疫组化试剂盒试剂1(聚合物辅助剂)和试剂2(羊抗兔/小鼠IgG多聚体)作用后,DAB显色、封片、观察。以阳性细胞率判断结果:0~20%阳性细胞记0分,代表阴性;20%~50%阳性细胞记1分,代表弱阳性;50%~100%阳性细胞记2分,代表强阳性。

3.细胞培养及慢病毒转染

SH-SY5Y细胞用含10%胎牛血清、1%青-链霉素的DMEM/高糖培养液,置于37 ℃、5%CO2的细胞培养箱中培养,0.25%胰酶消化传代。参照吉玛慢病毒转染手册,用HA117过表达和空载病毒按MOI 50转染SH-SY5Y细胞,构建对照组和HA117过表达组,病毒转导72 h后继续传代扩增细胞。取对数生长期实验组和对照组细胞以0.5×105个/ml接种于细胞爬片上,24 h后更换为含10 μmol/L RA的完全培养基,隔天换液,作用7 d。

4.细胞免疫荧光

细胞爬片用4%多聚甲醛固定,0.5% Triton X-100通透细胞膜,小牛血清工作液封闭1 h后孵MAP2一抗(1∶200),4 ℃过夜,红色荧光二抗避光孵育30 min,DAPI孵育5 min染核,抗荧光淬灭剂封片,倒置荧光显微镜下观察。

5.Western Blot

采用凯基全蛋白提取试剂盒提取培养细胞总蛋白,紫外分光光度法检测蛋白浓度,-20 ℃保存备用。以100 μg总蛋白上样,经10% SDS-PAGE凝胶电泳分离,100 V湿转80 min至PVDF膜,5%脱脂牛奶封闭2 h,滴加一抗,DPF3(1∶500稀释)、MAP2(1∶250稀释)、NSE(1∶2 000稀释),内参为β-Actin(1∶1 000稀释),4 ℃过夜,TBST摇洗,滴加抗兔或小鼠二抗(1∶2 000稀释)室温孵育2 h,TBST洗膜,ECL化学发光剂显影,Genesnap凝胶图像分析系统扫描分析,以相对灰度值代表蛋白相对表达量。

四、统计学处理

用Graphpad Prism 5.0(Graphpad Softwar, Inc, USA)软件进行分析,结果以±s表示。两样本间比较采用t检验。P<0.05为差异有统计学意义。

结果
一、HA117及DPF3在NB中RNA的表达差异

HA117的RNA在NB中的表达(30.14±15.96)明显高于GNB/GN(1.03±0.37),差异有统计学意义(P<0.05)。DPF3的mRNA在NB中的表达(0.81±0.17)明显低于GNB/GN(3.14±1.09),差异有统计学意义(P<0.05),与HA117的趋势相反。

二、免疫组化检测DPF3蛋白在NB中的表达(图1)
点击查看大图
图1
DPF3在各组织中的表达(DAB染色,×200)1A.未分化神经母细胞瘤;1B.分化中神经母细胞瘤;1C.神经节神经母细胞瘤;1D.神经节细胞瘤
点击查看大图
图1
DPF3在各组织中的表达(DAB染色,×200)1A.未分化神经母细胞瘤;1B.分化中神经母细胞瘤;1C.神经节神经母细胞瘤;1D.神经节细胞瘤

DPF3在GNB/GN中呈强阳性表达,在分化中的NB中呈弱阳性表达,在未分化/分化差的NB中呈阴性表达。

三、HA117过表达对SH-SY5Y细胞中DPF3表达的影响

qPCR检测显示,HA117过表达组RNA表达量(2.016±0.581)较对照组(0.000 168±0.000 142)明显升高,差异有统计学意义(P<0.05),说明HA117过表达SH-SY5Y细胞构建成功。HA117过表达组DPF3的mRNA表达量(0.704±0.152)较对照组(2.181±0.401)显著降低,差异有统计学意义(P<0.05)。Western blot检测显示,HA117过表达后DPF3蛋白相对表达量明显降低(图2),表明HA117可调节DPF3表达。

点击查看大图
图2
DPF3蛋白在对照组及HA117过表达组细胞中表达情况
点击查看大图
图2
DPF3蛋白在对照组及HA117过表达组细胞中表达情况
四、维甲酸作用SH-SY5Y细胞后细胞形态及MAP2、NSE蛋白的表达

经10 μmol/L维甲酸(retinoic acid,RA)诱导7 d后,对照组细胞生长速度明显减慢,细胞长出长的突起,发生神经元样分化(图3A图3B);而HA117过表达组细胞生长基本不受抑制,无明显细胞突起(图3C图3D)。免疫荧光染色显示,对照组SH-SY5Y细胞经RA作用后神经特异性标志物MAP2呈强阳性红色荧光(图4A),HA117过表达组SH-SY5Y细胞红色荧光较弱(图4B)。Western blot检测发现,经RA诱导后,HA117过表达组的MAP2、NSE蛋白的表达水平显著低于对照组(图5)。以上结果表明HA117过表达后,RA诱导SH-SY5Y分化作用受到抑制。

点击查看大图
图3
维甲酸诱导后HA117过表达组及对照组在不同放大倍数下细胞形态3A.对照组(×100);3B.对照组(×200);3C.HA117过表达组(×100);3D.HA117过表达组(×200)
点击查看大图
图3
维甲酸诱导后HA117过表达组及对照组在不同放大倍数下细胞形态3A.对照组(×100);3B.对照组(×200);3C.HA117过表达组(×100);3D.HA117过表达组(×200)
点击查看大图
图4
免疫荧光染色检测维甲酸诱导后MAP2蛋白在对照组(4A)和HA117过表达组(4B)中表达情况(×200)
点击查看大图
图4
免疫荧光染色检测维甲酸诱导后MAP2蛋白在对照组(4A)和HA117过表达组(4B)中表达情况(×200)
点击查看大图
图5
维甲酸处理后MAP2、NSE蛋白在对照组和HA117过表达组细胞中的表达情况
点击查看大图
图5
维甲酸处理后MAP2、NSE蛋白在对照组和HA117过表达组细胞中的表达情况
讨论

NB占儿童肿瘤的8%~10%,起源于分化异常或分化阻滞的神经嵴细胞[8]。NB的临床和生物学表现因发病年龄、部位、MYCN扩增和分化程度不同而差异较大。部分呈恶性进展,预后较差;部分可自行消退或转化为良性肿瘤。NB的分化程度与患儿预后密切相关,分化程度高的预后较好。有研究报道在过表达MYCN原癌基因的NB转基因模型鼠中,神经嵴分化阻滞可导致神经外胚层前体恶性转化为NB[9]。近年来,成神经细胞分化阻滞与促分化机制已成为研究热点,RA作为经典的促分化剂,已用于Ⅳ期NB多模式治疗后残留病灶的治疗,然而RA的耐药性已成为限制其应用的主要因素[10,11]。NB的分化过程复杂,进一步弄清NB分化的调控机制对于克服RA耐药、开发新治疗方式,有重要参考意义。

许多与神经分化发育相关的转录调节因子在NB的发生中也发挥着重要作用[12]。HA117是本课题组在研究白血病RA多药耐药中发现的一个新序列片段,现已登录Gen Bank(登录号:CB214920)。经生物信息学分析,HA117可能是一个长链非编码RNA(long non-coding RNA,lncRNA),定位于14q24.2,其邻近基因为DPF3和RGS6,两者均参与了神经系统分化发育。HA117在HD样本病变段较正常段组织中异常高表达,而DPF3的表达则与HA117相反,推测HA117可能有抑制肠神经嵴分化作用[7]。已有研究报道RET、PHOX2B等多个分化相关基因共同参与NB及HD的发生发展[13,14,15,16]。那么HA117及DPF3是否也参与了NB的发生发展呢?

本研究首次在分化程度不同的NB中检测HA117及DPF3的表达,发现HA117在分化差的NB中的表达量较分化程度高的GNB/GN中高,而DPF3的表达趋势则与之相反,且差异有统计学意义。提示HA117及DPF3可能与NB分化相关,HA117可能通过下调DPF3而发挥抑制NB分化作用。为进一步验证我们的推测,我们采用慢病毒基因转导方式,在SH-SY5Y细胞中过表达HA117,利用RA诱导该细胞分化,结果HA117过表达组MAP2和NSE较对照组表达量低,提示HA117具有对抗RA诱导NB分化的作用,同时HA117过表达后DPF3表达下调。DPF3又称BAF45c,是染色质重塑复合物SWI/SNF的一个亚基,参与表观遗传及基因调控,除参与神经分化外,还与骨骼肌及心肌的分化发育相关[17,18,19]。本实验中HA117过表达组SH-SY5Y拮抗RA诱导分化作用可能与DPF3下调相关。lncRNA中有相当多的一部分能顺式调节其邻近蛋白编码基因的转录,控制这些发育多样性基因位点的时空表达,并参与与之相关的发育和其它生物学过程[20]。推测HA117作为lncRNA,可能对其邻近的DPF3的表达具有负向调控作用,从而发挥抑制NB分化的作用。

综上所述,我们阐述了HA117及DPF3与NB的分化相关,并在细胞水平证实了过表达HA117可下调DPF3,并抑制RA的诱导分化作用,提示HA117可能通过下调其邻近基因DPF3而发挥抑制NB分化的作用,可能参与了NB的发生发展过程,可作为一个新的分子标志物,用于NB的预后检测和可能的治疗靶标。

利益冲突

利益冲突 无

参考文献
[1]
BrodeurGM. Neuroblastoma: biological insights into a clinical enigma[J]. Nat Rev Cancer20033(3):203-216. DOI:10.1038/nrc1014.
[2]
SchulteJH,PentekF,HartmannWet al. The low-affinity neurotrophin rec eptor,p75,is upregulated in ganglioneuroblastoma/ganglioneuroma and reduces tumorigenicity of neuroblastoma cells in vivo[J]. Int J Cancer2009124(10):2488-2494. DOI:10.1002/ijc.24204.
[3]
CohnSL,PearsonAD,LondonWBet al. The international neuroblastoma risk group (INRG) classification system: an INRG Task Force report[J]. J Clin Oncol200927(2):289-297. DOI: 10.1200/JCO.2008.16.6785.
[4]
TakenobuH,ShimozatoO,NakamuraTet al. CD133 suppresses neuroblastoma cell differentiation via signal pathway modification[J]. Oncogene201130(1):97-105.DOI:10.1038/onc.2010.383.
[5]
ZhengGH,FuJR,XuYH, et al. Screening and cloning of multi-drug resistant genes in HL-60/MDR cells[J]. Leuk Res, 200933(8):1120-1123. DOI:10.1016/j.leukres.2008.11.018.
[6]
DuanW,JinX,XiuY, et al. Expression of the novel all-trans retinoic acid-related resistance gene HA117 in pediatric solid tumors[J]. J Pediatr Hematol Oncol201436(1):45-50.DOI: 10.1097/MPH.0b013e31828e5d73.
[7]
LiuH,LuoY,LiS, et al. Expression profiles of HA117 and its neighboring gene DPF3 in different colon segments of Hirschsprung’s disease[J]. Int J Clin Exp Pathol20147(7): 3966-3974.
[8]
SchroederH,WacherJ,LarssonH, et al. Unchanged incidence and increased survival in children with neuroblastoma in Denmark 1981-2000:a population-based study[J]. Br J Cancer, 2009, 100(5):853-857.DOI: 10.1038/sj.bjc.6604922.
[9]
StallingsRL,FoleyNH,BrayIM, et al. MicroRNA and DNA methylation alterations mediating retinoic acid induced neuroblastoma cell differentiation[J]. Semin Cancer Biol201121(4):283-290.DOI: 10.1016/j.semcancer.2011.07.001.
[10]
MatthayKK,ReynoldsCP,SeegerRC, et al. Long-term results for children with high-risk neuroblastoma treated on a randomized trial of myeloablative therapy followed by 13-cis-retinoic acid: a children’s oncology group study[J]. J Clin Oncol200927(7):1007-1013. DOI: 10.1200/JCO.2007.13.8925.
[11]
BarbieriE,De PreterK,CapassoM, et al. Histone chaperone CHAF1A inhibits differentiation and promotes aggressive neuroblastoma[J]. Cancer Res201474(3):765-774.DOI: 10.1158/0008-5472.CAN-13-1315.
[12]
NakagawaraA,OhiraM. Comprehensive genomics linking between neural development and cancer: neuroblastoma as a model[J]. Cancer Lett2004, 204(2):213-224.DOI: 10.1016/S0304-3835(03)00457-9.
[13]
TakahashiY,SippD,EnomotoH. Tissue interactions in neural crest cell development and disease[J]. Science, 2013, 341(6148):860-863.DOI:10.1126/science.1230717.
[14]
ZhangD,IghaniyanS,StathopoulosLet al. The neural crest: a versatile organ system[J]. Birth Defects Res C Embryo Today2014, 102(3):275-298. DOI: 10.1002/bdrc.21081.
[15]
SzymońskaI,BorgenvikTL,KarlsvikTM, et al. Novel mutation-deletion in the PHOX2B gene of the patient diagnosed with Neuroblastoma,Hirschsprung's Disease, and Congenital Central Hypoventilation Syndrome (NB-HSCR-CCHS) Cluster[J]. J Genet Syndr Gene Ther20156(3). https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC4718609/[Epub 2015-09-07]DOI:10.4172/2157-7412.1000269.
[16]
TakahashiM. Ret protooncogene and human-diseases -review[J]. Int J Oncol1994, 4(1):81-84.DOI: 10.3892/ijo.4.1.81.
[17]
LangeM,KaynakB,ForsterUB, et al. Regulation of muscle development by DPF3, a novel histone acetylation and methylation reader of the BAF chromatin remodeling complex[J]. Genes Dev200822(17): 2370-2384.DOI: 10.1101/gad.471408.
[18]
LessardJ,WuJI,RanishJA. An essential switch in subunit composition of a chromatin remodeling complex during neural development[J]. Neuron200755(2):201-215. DOI: 10.1016/j.neuron.2007.06.019.
[19]
HotaSK,BruneauBG. ATP-dependent chromatin remodeling during mammalian development[J]. Development, 2016, 143(16):2882-97.DOI: 10.1242/dev.128892.
[20]
LuoS,LuJY,LiuL, et al. Divergent lncRNAs regulate gene expression and lineage differentiation in pluripotent cells[J]. Cell Stem Cell2016, 18(5):637-652.DOI: 10.1016/j.stem.2016.01.024.
 
 
展开/关闭提纲
查看图表详情
回到顶部
放大字体
缩小字体
标签
关键词